团体标准 ICS 11.220 B 41 T/CVMA 37-2020 种鸡场鸡白痢 和鸡伤寒 监测控制技术 指南 Technical guidelines for surveillance and control of Pullorum disease and Fowl typhoid in breeding chicken farm s 2020-12-22发布 2020-12-22实施 中 国 兽 医 协 会 发布 中国兽医协会 CVMA 全国团体标准信息平台 T/CVMA 37 -2020 I 前 言 本文件按照 GB/T 1.1 —2020《标准化工作导则 第1部分：标准化文件的结构和起草规 则》的规定起草 。 请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任 . 本文件由中国兽医协会提出并归口。 本文件起草单位：中国动物疫病预防控制中心 、扬州大学 、山东农业大学 、山东省动物 疫病预防控制中心、山东益生种畜禽股份有限公司 、华南农业大学 本文件主要起草人： 顾小雪、孙淑红、朱国强、 徐琦、刘洋、 王传彬、 刘玉良、 魏巍、 郭龙宗、 杨斌、戴鹏、 陈静、杨溢、曹伟胜、 羊扬、王贵升、 孟霞、段强德、夏芃芃 、王方 昆、崔治中 中国兽医协会 CVMA 全国团体标准信息平台 T/CVMA 37 -2020 1 种鸡场鸡白痢 和鸡伤寒 监测控制技术指南 1 范围 本文件规定了种鸡群鸡白痢 和鸡伤寒 监测和控制 相关的技术 指南。 本文件所列种鸡 监测控制 技术主要适用于 原种鸡群和祖代鸡群 鸡白痢和鸡伤寒 的监测 和控制，其他类型鸡群可参照执行 。 2 规范性引用文件 下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中，注日 期的引用文件，仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包 括所有的修改单）适用于本文件。 NY/T 536 鸡伤寒和鸡白痢诊断技术 NY/T 1620 种鸡场动物卫生规范 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件 。 3.1 种鸡 breeding chicken 专门用于生产下一代鸡的鸡群，包括种公鸡和种母鸡，从代次上 可分为曾祖代 、祖代和 父母代。其中，只有曾祖代 的鸡可以自繁留种，其他后代都不能留作和它同级的种，通常将 曾祖代称 为原种鸡群或者核心群。 3.2 鸡白痢 Pullorum disease 鸡白痢是由鸡白痢 沙门菌（Salmonella pullorum）引起鸡和火鸡等的传染病，是危害我 国养鸡业的重要疾病。 鸡白痢以急性败血性经过或以慢性隐性感染为特征。 雏鸡发生本病时， 发病率和死亡率均较高，严重影响雏鸡成活率；青年 鸡发病后，死亡率可达 10 %～20 %， 病程可达 20 d～30 d，生长发育受阻；成年鸡感染本病多为慢性或隐性经过，不表现明显的 症状，但影响生产性能，长期带菌，成为本病的主要传染源 。 3.3 鸡伤寒 Fowl typhoid 鸡伤寒是由鸡伤寒 沙门菌（Salm onella gallinarum ）引起鸡和火鸡等的传染病，是危害 我国养鸡业的重要疾病。鸡伤寒通常是危害成年鸡的一种急性或慢性败血症，鸡与火鸡都可 感染，致各种年龄鸡的败血性伤寒症，也致成年母鸡卵巢炎症 。 4监测方法 中国兽医协会 CVMA 全国团体标准信息平台 T/CVMA 37 -2020 2 4.1平板凝集试验 参照 NY/T 536进行。 4.2 ELISA 试验 可选用商品化试剂盒 。 4.3 鸡白痢和鸡伤寒沙门菌 分离与鉴定 参照 NY/T 536进行。 5 本底监测 5.1 血清学监测 5.1.1 监测时间：不同年龄段的鸡群， 45日龄， 154日龄， 300日龄， 400日龄。 5.1.2 样品采集： 按预期流行率 1 %，置信度 95 %（CL=0.95），根据公式 （1）计算样品数量， 采集血清样品 。 n = [1 ] ×（N － ） …………… … (1) 式中： n —— 抽样数量 CL —— 置信水平 D —— 群体中预估的最小发病动物数，即： N×最小预期流行率 N —— 群体中的动物总数 5.1.3 试验方法：平板凝集试验 或ELISA试验。 5.2病原学监测 5.2.1鸡群 5.2.1.1 监测时间：18 d~21 d胚龄种蛋，出雏、育成初期以及开产前鸡群。 5.2.1.2 样品采集： 种蛋采集弱胚和死胚。出雏鸡采集弱雏。 育成初期、开产前 鸡群采集鸡 泄殖腔拭子 ，按预期流行率 1 %，置信度 95 %（CL=0.95），根据公式（ 1）计算样品数量。 5.2.1.3 试验方法：鸡白痢和鸡伤寒沙门菌分离鉴定。 5.2.2 环境 5.2.2.1 监测时间：与鸡群病原学监测同时进行 。 5.2.2.2 样品采集：采集鸡舍内 饮水、饲料、粪污、污垢、粉尘 ，鸡舍湿帘和风机口粪污、 污垢，运输车辆粪污、污垢 等。可根据种鸡群的规模 大小和净化的不同阶段 等决定不同类型 环境样品的采集数量 。 5.2.2.3 试验方法：鸡白痢和鸡伤寒沙门菌分离鉴定。 5.3 本底监测结果的处置 5.3.1 如果鸡群本底监测血清学和病原学均为阴性，则按 5.1、5.2方法定期监测。 5.3.2 如果本底监 测有血清学和 /或病原学阳性，则按照 6、7开展监测控制。 中国兽医协会 CVMA 全国团体标准信息平台 T/CVMA 37 -2020 3 6 垂直传播的监测控制 6.1 自繁自育原种鸡群的监测控制 6.1.1 育成初期 鸡检测与淘汰 6.1.1.1 监测时间： 育成初期 （6周龄 ~8周龄） 。 6.1.1.2 样品采集：按照 10 %比例无菌采集鸡泄殖腔拭子。 6.1.1.3 试验方法：鸡白痢和鸡伤寒沙门菌分离鉴定。 6.1.1.4 监测结果处置： 若检测为阳性，则 阳性和同 笼鸡均淘汰。阴性鸡 继续饲养至开产前 （有条件的种鸡场可 将阴性鸡 转移至用具、环境检测合格的新消毒鸡舍 饲养） 。 6.1.2 种公鸡检测 与淘汰 6.1.2.1 血清学检测与淘汰 6.1.2.1.1 监测时间：人工授精前。 6.1.2.1.2 样品采集：无菌采集 每只种公鸡的 血清。 6.1.2.1.3 试验方法： 平板凝集试验或 ELISA试验。 6.1.2.1.4 监测结果处置 ：淘汰平板凝集阳性和 /或ELISA检测阳性鸡 ，同时淘汰同笼鸡 。检 测为阴性的种公鸡转移至用具、环境检测合格的新消毒鸡舍饲养。 6.1.2.2 病原学检测与淘汰 6.1.2.2.1 监测时间：人工授精前。 6.1.2.2.2 样品采集：对抗体检测均为阴性的种公鸡无菌采集精液。 6.1.2.2.3 试验方法：鸡白痢和鸡伤寒沙门菌分离鉴定。 6.1.2.2.4 监测结果处置 ：淘汰病原阳性鸡和同笼鸡 。检测为阴性的种公鸡转移至 用具、环境 检测合格的新消毒鸡舍 饲养。 6.1.3 种母鸡开产前检测与淘汰 6.1.3.1 血清学检测与淘汰 6.1.3.1.1 监测时间：开产前（ 18周龄 ~24周龄） 。 6.1.3.1.2 样品采集： 无菌采集每只种母 鸡的血清。 6.1.3.1.3 试验方法： 平板凝集试验或 ELISA试验。 6.1.3.1.4 监测结果处置 ：淘汰平板凝集阳性 和/或ELISA检测阳性鸡 ，同时淘汰同笼鸡，不 再作为育种选育个体 。检测为阴性的 种母鸡选留为后备种鸡，转移 至用具、环境检测合格的 新消毒鸡舍 ，单鸡单笼 隔离饲养。 6.1.3.2 病原学检测与淘汰 6.1.3.2.1 监测时间：开产前（ 18周龄 ~24周龄） 。 6.1.3.2.2 样品采集： 无菌采集 每只种母鸡的泄殖腔拭子。 6.1.3.2.3 试验方法：鸡白痢和鸡伤寒沙门菌分离鉴定。 6.1.3.2.4 监测结果处置 ：淘汰病原阳性鸡 和同笼鸡。检测为阴性的种母鸡选留为后备种鸡， 转移至用具、环境检测合格的新消毒鸡舍 ，单鸡单笼 隔离饲养。 6.1.4 种母鸡留种前检测与淘汰 中国兽医协会 CVMA 全国团体标准信息平台 T/CVMA 37 -2020 4 6.1.4.1 血清学检测与淘汰 6.1.4.1.1 监测时间：留种前（ 40周龄 ~45周龄） 。 6.1.4.1.2 样品采集： 无菌采集每只种母 鸡的血清。 6.1.4.1.3 试验方法： 平板凝集试验或 ELISA试验。 6.1.4.1.4 监测结果处置 ： 淘汰平板凝集阳性 和/或ELISA检测阳性 的鸡只，同时淘汰同笼 鸡，不再作为育种选育个体。 检测为阴性的种母鸡选留为后备种鸡，转移至用具、环境检测 合格的新消毒鸡舍，单鸡单笼隔离饲养。 6.1.4.2 病原学检测与淘汰 6.1.4.2.1 监测时间：留种前（ 40周龄 ~45周龄） 。 6.1.4.2.2 样品采集： 无菌采集每只种母鸡的泄殖腔拭子 。 6.1.4.2.3 试验方法：鸡白痢和鸡伤寒沙门菌分离鉴定。 6.1.4.2.4 监测结果处置 ：淘汰病原阳性鸡，同时淘汰同笼鸡。